Cellules souches et neurogenèse dans la rétine (SCANR)
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publications
Cabochette P#, Vega-Lopez G#, Bitard J#, Parain K#, Chemouny R#, Masson C#, Borday C#, Hedderich M, Henningfeld K, LockerM#, Bronchain O#, Perron M#. (2015). YAP controls retinal stem cell DNA replication timing and genomic stability. eLife. 4:e08488.
Mazurier N#, Parain K#, Parlier D, Pretto S#, Vernier P, Locker M#, Bellefroid E and Perron M. # (2014). Ascl1 as a novel player inthe Ptf1a transcriptional network for GABAergic cell specification in the retina. Plos One. 9(3):e92113.
Hanotel J, Bessodes N, Thélie A, Hedderich M, Parain K#, Van Driessche B, Oliveira Brandao K, Kricha S, Jorgensen M,Grapin-Botton A, Serup P, Van Lint C, Perron M#, Pieler T, Henningfeld KA, Bellefroid EJ. (2014). The Prdm13 histonemethyltransferase encoding gene is a Ptf1a-Rbp-j downstream target that promotes GABAergic over glutamatergic neuronal fate inthe dorsal neural tube. Developmental Biology. 386:340-57.
El Yakoubi W#, Borday C#, Hamdache J#, Parain K#, Tran HT, Vleminckx K, Perron M# and Locker M# (2012). Hes4 controlsproliferative properties of neural stem cells during retinal ontogenesis. Stem Cells, 30:2784-95.
Borday C#, Cabochette P#, Parain K#, Mazurier N#, Janssens S, Tran HT, Sekkali B, Bronchain O#, Vleminckx K, Locker M# &Perron M. # (2012). Antagonistic cross-regulation between Wnt and Hedgehog signaling pathways controls post-embryonic retinalproliferation. Development 139:3499-509.
Parain K#, Mazurier N#, Bronchain O#, Borday C#, Cabochette P#, Chesneau A#, Colozza G#, el Yakoubi W#, Hamdache J#,Gilchrist M, Pollet N, Perron M. # (2012). A large scale screen for neural stem cell markers in Xenopus retina. Developmental Neurobiology 72(4): 491–506.
Fields of research
Research Theme
Notre équipe SCaNR est associée au laboratoire privé de l’association Retina France, le CERTO (Centre d’Etudes et de Recherches Thérapeutiques en Ophtalmologie) avec lequel nous menons nos projets de recherche en collaboration.
Notre objectif à long terme est de contribuer aux avancées scientifiques permettant le développement d’approches thérapeutiques innovantes chez les patients atteints de maladies dégénératives de la rétine telles que les Rétinites Pigmentaires (RP) ou la Dégénérescence Maculaire Liée à l’Âge (DMLA).
L’une des stratégies choisie vise à revitaliser la capacité de régénération de la rétine qui est naturellement extrêmement limitée chez les mammifères. Au contraire, chez les poissons ou les amphibiens, différentes populations de cellules souches contribuent efficacement à la réparation de la rétine après lésion. Il s’agit donc de modèles de choix pour disséquer les voies de signalisation contrôlant les processus régénératifs et ainsi fournir des informations essentielles qui permettraient de stimuler la prolifération et le potentiel neurogénique des cellules souches rétiniennes dormantes des mammifères. Dans ce contexte, nous étudions et comparons chez le xénope et la souris, deux modèles dotés de capacités régénératives très différentes, les mécanismes qui sous-tendent la maintenance, le recrutement et l’activité des cellules souches rétiniennes adultes à la fois en conditions physiologiques et pathologiques de dégénérescence rétinienne.